Звезда не активнаЗвезда не активнаЗвезда не активнаЗвезда не активнаЗвезда не активна
 

УХОД ЗА ОПЛОДОТВОРЕННОЙ ИКРОЙ В ПЕРИОД ИНКУБАЦИИ 

Уход за оплодотворенной икрой включает в себя комплекс мероприятий, направленных на достижение максимальной выживаемости зародышей в заводских условиях.

На икру солнечный свет действует губительно, поэтому ее содержат в темноте, а все работы с икрой проводят при слабом рассеянном свете. В их число входят:

Проведение профилактической обработки икры от заболеваний: - однократно при закладке икры на инкубацию раствором йодинола (концен- трация 1:10000 при рН не более 7,5, экспозиция 10 мин) или в 0,5%-м растворе формалина в течение 3 мин;

- раствором малахитового зеленого (концентрация 1:200000, экспозиция 30 мин в проточной воде – 1 раз в 7–10 дней). Обработка необходима при наличии инкубационного отхода в живой икре более 3%;

- раствором формалина (в случае расслабления оболочки икры) в концентра- ции 1:4000 (1 г 40%-го формальдегида растворяют в 4 л воды) (купание икры в 0,01%-м рабочем растворе формалина), экспозиция – 10 мин. Обработка прово- дится после наступления стадии пигментации глаз с периодичностью 1 раз в 7 дней. Ежедневные измерения температуры воды в инкубаторах и содержания в ней кислорода

Развитие зародышей непосредственно зависит от температуры воды, а от со- держания в ней кислорода – не только их развитие, но и выживаемость.

 

Температуру воды и содержание в ней кислорода обязательно измеряют 2–3 раза в сутки. Усредненные данные ежедневно заносят в журнал гидрохимического анализа, а усредненные данные о температуре воды – в журнал градусо-дней и используют при ежедневном расчете количества градусо-дней (суммы набранного тепла) по каждой партии лососей.

Установка нормативной проточности (расхода воды) в инкубационных ап- паратах и ежедневное слежение за расходом воды в этих аппаратах. В инкубаторах Аткинса расширенного вмещения (насыпного типа) (Pazifik II) устанавливается про- точность из расчета 35–40 л/мин; в боксах-инкубаторах ящичного типа (Pazifik I) – 50–80 л/мин, в вертикальных инкубаторах NOPAD – 80–100 л/мин на одну стойку из 5 инкубаторов.

Следует учитывать, что за 10–12 сут до предполагаемого начала выклева эм- брионы становятся особенно чувствительными к недостатку проточности и содер- жания в воде кислорода, вследствие чего непосредственно в самих инкубаторах возможны массовые заморные явления. Поэтому за 10–12 сут до предполагаемо- го выклева свободных эмбрионов в инкубаторах устанавливают максимальный (в пределах нормативного лимита) уровень расхода воды.

Ежедневные наблюдения в инкубационных аппаратах на предмет отсут- ствия в них турбулентности воды, а следовательно, и незапланированного пе- ремешивания икры. При возникновении турбулентности следует незамедлитель- но ее устранить путем регулирования воды в кране.

Ежедневный осмотр икры в целях оценки ее санитарного состояния – на наличие погибшей икры, заиления, а если икра поражена какими-либо заболе- ваниями (например, сапролегнией или расслаблением оболочки), то необходимо определить, распространяется ли это заболевание далее на живую икру.

Защита икры от воздействия прямых источников света. Воздействие све- та губительно влияет на развитие зародышей. Поэтому обязательно используются специальные покрытия, обычно из прозрачного оранжевого пластика, отражаю- щие свет, которыми накрывают инкубационные аппараты.

Проведение стрессирования икры в целях обнаружения части неоплодотво- ренной икры или погибшей на ранних стадиях развития зародышей, но с некоагу- лированным белком, по цвету не отличающейся от живой икры (рис. 38).

Для этого икру на стадии четко выраженной пигментации глаз отбирают из инкубационного аппарата в пластиковую сетчатую круглую корзину с использова- нием шланга. По принципу сифона вода и вместе с ней икра из инкубационного аппарата поступают по шлангу в корзину. На следующие сутки у стрессированной неоплодотворенной или погибшей икры белок будет коагулирован и она побелеет. Стрессирование икры можно проводить и непосредственно в инкубационных ап- паратах путем ее активного перемешивания. Однако в этом случае часть нежиз- неспособных икринок может не побелеть, что впоследствии негативно отразится на эффективности выборки инкубационного отхода.

Рыхление икры в инкубационных аппаратах для предупреждения повы- шенной смертности эмбрионов. Заиление, слёживание, «завоздушивание» икры, наличие большого количества погибшей икры, поражение грибковой инфекцией (сапролегниоз) – все эти неблагоприятные условия по отдельности или в комплек-

се являются существенным фактором риска для развития и здоровья эмбрионов. В результате слёживания икры в инкубационных аппаратах нарушается ее омыва- емость водой, а ток воды, проходящий снизу вверх на различные участки поверх- ностных слоев икры, создает её непрерывную турбулентность, часто приводящую к существенному повышению инкубационных отходов.

Первым обязательным условием является ориентировочное определение 7-го этапа эмбрионального развития по оценке возраста эмбрионов с начала их опло- дотворения до момента осмотра по текущему журналу градусо-дней (по сумме на- бранного тепла и количеству суток). Например, при развитии эмбрионов кеты при средней температуре воды 6,5–7oС следует приступать к ее осмотру на 27–30-е сутки от начала ее оплодотворения при 190 градусо-днях.

Необходимо учитывать, что при пониженной температуре инкубации сроки эм- брионального развития лососей существенно удлиняются, а количество набран- ного эмбрионами тепла уменьшается. Например, на ЛРЗ Магаданской области начало 7-го этапа эмбрионального развития кеты в условиях содержания икры при температуре воды 2,4oС отмечается только на 44-е сутки при достижении 157 градусо-дней. И наоборот, в условиях содержания икры при высокой температу- ре воды (порядка 10oС) наступление 7-го этапа эмбрионального развития проис- ходит уже на 20–21-е сутки, сумма набранного тепла увеличивается до 200–210 градусо-дней.

Вторым обязательным условием для принятия решения о проведении рых- ления икры является предварительный осмотр эмбрионов с целью определения того, что желточная пробка закрыта, 6-й этап эмбрионального развития завершен и наступил 7-й этап, при котором эмбрионы уже менее чувствительны к механиче- ским воздействиям.

Для этого живую икру в количестве 100 шт. помещают в чашку Петри, напол- ненную водой из инкубатора. Чашку Петри с икрой ставят на ровную поверхность, покрытую черной тканью. Затем приступают к визуальному осмотру икры на пред- мет обнаружения, что процесс эпиболии – обрастание желточного мешка бласто-

Рис. 38. Стрессовый способ отборки икры, Таранайский ЛРЗ, Сахалинская область

43

дермой (закрытие желточной пробки икринки) – завершен. При поверхностном визуальном обследовании заключение о том, что этот процесс завершен, может быть сделано на основании того, что на поверхности одного из полюсов икринки не просматривается беловатое кольцо. Если среди осмотренных 100 икринок бу- дут обнаружены хотя бы 1–3 икринки с наличием беловатого кольца, то рыхление икры не проводят и ждут завершения стадии эпиболии.

В целях подтверждения того, что 6-й этап эмбрионального развития завершен и наступил 7-й этап, дополнительно проводится прижизненная оценка икринок. Икринку медленно и аккуратно перекатывают между пальцами до того момента, когда ее оболочка станет прозрачной и эмбрион с его функциональными органа- ми и системами станет видимым под микроскопом (бинокуляром). Затем эмбрион аккуратно извлекают из-под оболочки и подсчитывают число сегментов и длину эмбриона (оптика бинокуляра обязательно должна быть оснащена измеритель- ной шкалой). Определение этапа и стадии развития эмбрионов должно осущест- вляться по книге А. И. Смирнова (1975) не менее чем на 10 эмбрионах.

При невозможности по каким-либо причинам определения 7-го этапа эмбрио- нального развития лососей или сомнений, что этот этап наступил, рыхление икры в инкубационных аппаратах недопустимо.

Рыхление икры с 7-го этапа эмбрионального развития проводится с частотой 1 раз в 3 суток до 12-го этапа эмбрионального развития (выклева свободных эм- брионов). Однако это необходимо делать с особой осторожностью. Для рыхления используется специально изготовленный сачок (рис. 39).

Рис. 39. Сачок для рыхления икры

К деревянной рейке длиной 600–700 мм прикреплена круглая металлическая рамка O 60–70 мм, изготовленная из проволоки толщиной 3–4 мм. Проволока туго обшивается мелкоячеистой безузелковой делью, размер ячеи которой зависит от диаметра икринок (обычно 3–4 мм).

По окончании 9-го, а также на 10-м этапе развития эмбрионов отходы при ме- ханических воздействиях самые минимальные. Разрешается проводить рыхле- ние, «душевание», стрессирование икры, выборку отходов, а также перевозку ее в транспортировочных контейнерах.

На 11-м этапе перечисленные рыбоводные работы (кроме рыхления, переме- шивания в инкубационных аппаратах и выборки отходов ручным способом) про- водить не рекомендуется.

Выборка погибшей, неоплодотворенной икры (отхода) механическим, ручным, флотационным способами. Выборка отхода осуществляется на вто- рые – третьи сутки после стрессирования икры.

Сортировка, выборка отходов икры любым из рекомендованных способов на ЛРЗ Магаданской области осуществляется на стадии пигментации глаз при хоро- шо выраженном глазке на 9-м этапе эмбрионального развития лососей. Для кеты, горбуши и кижуча эти мероприятия обычно проводятся в среднем на 34–35 сут при

44

270–280 градусо-днях от момента оплодотворения, для нерки – на 35–40 сут при 280–330 градусо-днях.

Однако необходимо учитывать, что формирование этого этапа зависит от тем- пературы водоисточника, питающего ЛРЗ. Результаты наблюдений за продолжи- тельностью инкубации тихоокеанских лососей до формирования начальной ста- дии пигментации глаз (9-го этапа эмбрионального развития) на ЛРЗ Магаданской области представлены в табл. 4. Эти данные рекомендуются к использованию для организации работ, связанных с любыми механическими воздействиями на икру. Организация этих работ напрямую зависит от качества обследования икринок и определения стадий и этапов развития тихоокеанских лососей на ЛРЗ.

При наличии большого количества погибших икринок в основном проводят выборку механизированным способом. При этом способе удаления отходов ис- пользуют икроотборочные (сортировочные) машины J-SORTER с установленны- ми в них фотоэлементами (рис. 40).

Рис. 40. Модификации машин J-SORTER для сортировки икры

Машины укомплектованы несколькими съёмными дисками с отверстиями, со- ответствующими размерам икринок. Точность сортировки живой икры от неопло- дотворенной и погибшей в этих машинах приближается к 99%.

Икру загружают в приемную емкость (рис. 41 слева) и пропускают на вращаю- щихся съемных дисках через фотоэлементы, установленные в машине. В резуль- тате побелевшая икра «выстреливается» в одну емкость, а оранжевая – в другую (рис. 41 справа).

Рис. 41. Механизированная сортировка икры, машина J-SORTER

При наличии большого количества погибших икринок можно вести выборку флотационным способом – «купание» икры в 10–12%-м растворе поваренной соли. При выборке отхода этим способом в условиях инкубации икры в аппаратах Аткинса расширенного вмещения (насыпного типа) наиболее удобно пользовать- ся аппаратом-носилками (рис. 42).

а б Рис. 42. Аппарат-носилки для выборки икры флотационным (солевым) способом: а – общий вид, б – вид сбоку

Икру из инкубационного аппарата загружают совком в аппарат-носилки, при этом его емкость рассчитана на емкость одного его отсека (100–120 тыс. икр. кеты). Аппарат-носилки с икрой погружают в ванну с раствором поваренной соли, нежизнеспособные икринки, имеющие другую плотность, чем живые икринки, всплывают на поверхность аппарата и их удаляют совком. Длительность выборки из аппарата всплывших икринок не должна превышать 10–20 с. После выборки «чистая» живая икра загружается в инкубационные аппараты – рукав придонной части носилок направляется в отсек инкубатора и развязывается, икра при этом равномерно распределяется по отсеку. Наличие двух-трех таких аппаратов-носи- лок позволяет вести выборку икры поточно, без простоев. Бригада из четырех че- ловек в течение 1 ч может провести выборку от 0,8 до 1 млн икринок.

 

При небольшом отходе выборку погибших икринок следует проводить ручным способом. Для этого используют специальный стол со сливным отверстием (рис. 43). Икру загружают совками или ковшиками в емкости (ведра, тазы). Затем рас- кладывают на рамки, предназначенные для инкубации икры в аппаратах Аткинса рамочного типа (рис. 44, 45).

Рис. 45. Выборка отходов икры ручным способом на Курильском ЛРЗ, Сахалинская область

Выборку икры проводят в проточной воде. Нежизнеспособные икринки удаля- ют пинцетом, обычно изготовленным из бамбука, наконечники которого обмотаны медной проволокой. Из этой же проволоки для фиксации икринок на каждом из его наконечников монтируют колечки в зависимости от размера икринок.

Производительность такой выборки невысока, но она отличается высоким ка- чеством и практически полной выборкой отхода.

Рис. 43. Стол для ручной выборки инкубационных отходов, Анюйский ЛРЗ, Хабаровский край

Рис. 44. Рамка для инкубации икры тихоокеанских лососей, используемая для выборки инкубационных отходов ручным способом